希望改善組織切片中的細胞核染色？我們可以幫忙！組織學標本通常需要細胞核和組織的其他細胞成分之間的明顯區(qū)別，以給病理學家提供最佳的診斷外觀。蘇木精一種堿性染料，將細胞核染色，使其呈現(xiàn)藍色到紫色。曙紅將粉紅色調(diào)添加到細胞質(zhì)中，將紅色調(diào)添加到血細胞中，從而產(chǎn)生對比鮮明的藍紫色和粉紅色陰影，這在標本的細胞結(jié)構(gòu)中是截然不同的。

對于使用組織學標本的常規(guī)診斷，使用蘇木精和伊紅(H&E)染色是目前觀察細胞結(jié)構(gòu)細節(jié)的方法。因為這種染色顯示了如此廣泛的細胞質(zhì)、細胞核和細胞外基質(zhì)特征，實驗室技術(shù)人員能夠控制嗜堿性染色的外觀和強度，以滿足病理學家的期望。主要有兩種類型:Harris H&E，一種回歸技術(shù)，和Gill的H&E，一種漸進技術(shù)。這篇文章討論了如何改善每種技術(shù)的嗜堿性核染色。

Harris  H&E染色:嗜堿性染色太弱
哈里斯蘇木精是一種回歸染色技術(shù)，因此組織切片首先用蘇木精過度染色以產(chǎn)生藍色細胞核，然后在分化步驟中在弱酸酒精中去除多余的染料。

當蘇木精的顏色太弱或標本暴露在蘇木精中的時間不夠長時，H&E染色中的弱嗜堿性核染色就會發(fā)生。以下是我們推薦的解決方案:

1. 蘇木精中的暴露時間太有限:

   為了解決曝光時間，調(diào)整載玻片在蘇木精染色溶液中的時間長度，直到您看到所需的染色強度。

2. 蘇木精的pH值超出范圍:

   為了解決蘇木精被稀釋超過pH值5-6的理想范圍的問題，在染色過程中盡量減少水分帶入蘇木精溶液。

3. 水的pH值超出范圍:

   染色前檢查水的pH值，如果可能，用去離子水或蒸餾水代替自來水。這可以解決水中含有太多氯的問題，氯可以作為漂白劑；減弱蘇木精染色。

4. 弱溶液滲透:

   對于石蠟包埋標本上的H&E染色，如果嗜堿性染色太淺，有可能石蠟沒有全從組織切片中溶解出來。如果組織切片中有蠟，水基染色液不能適當滲透標本，導(dǎo)致染色弱。將載玻片放回新鮮二甲苯中，去除切片中的石蠟，然后繼續(xù)對組織標本進行重新染色。

5. 不良固定或組織處理:

   弱嗜堿性染色的另一個原因是不良的固定或處理。這意味著染色劑不會與組織結(jié)合；這是準備紙巾的問題。

6. 酸性酒精濃度過高:

   如果酸性醇的濃度對于分化步驟來說太強，或者如果樣本在酸性醇中花費了太多時間，這種回歸染色技術(shù)可能導(dǎo)致太多的染料被去除。通過選擇較低濃度的酸性酒精溶液(即從1%變?yōu)?.5%溶液)或減少樣品在溶液中的時間來解決這一問題。

Gill’s H&E染色:嗜堿性染色太弱
吉爾蘇木精是一種進行性染色。將染色劑施用于組織切片，而不需要在區(qū)分劑(通常為酸性醇)中進行后續(xù)步驟，以去除過量的嗜堿性染色劑。

1. 蘇木精中的曝光時間太有限:要解決曝光時間，調(diào)整載玻片在蘇木精染色中的時間長度，直到您看到所需的染色強度。
2. 蘇木精的pH值超出范圍:為了解決蘇木精被稀釋超過pH值5-6的理想范圍的問題，在染色過程中，盡量減少水分帶入蘇木精溶液。
3. 水的pH值超出范圍:在染色前檢查水的pH值，如果可能，用去離子水或蒸餾水代替自來水。這可以解決水中含有太多氯的問題，氯可以作為漂白劑，可以減弱蘇木精染色。
4. 弱溶液滲透:對于石蠟包埋標本上的H&E染色，如果嗜堿性染色太淺，有可能石蠟沒有全從組織切片中溶解出來。如果組織切片中有蠟，水基染色液不能適當滲透標本，導(dǎo)致染色弱。將載玻片放回新鮮的二甲苯中，去除切片中的石蠟，然后繼續(xù)對組織標本進行重新染色。
5. 固定或處理不良:弱嗜堿性染色的另一個原因是固定或處理不良。這意味著染色劑不會與組織結(jié)合；這是準備紙巾的問題。